1. 儲存液的配制(50mg/ml)
稱取0.5g 潮霉素B加入10ml無菌去離子水內使其*溶解。先用5ml無菌去離子水預濕潤0.22μm針頭式過濾器，除盡水。之后使用此濾器過濾潮霉素B溶液，除菌后分裝成單次使用的小量(如1ml)放到-20℃凍存，約1年穩定。
2. 常用篩選濃度
注意：潮霉素B用來篩選穩轉株的工作濃度需要根據細胞類型，培養基，生長條件和細胞代謝率而變化，推薦使用濃度為50-1000μg/mL。對于*次使用的實驗體系建議通過建立殺滅曲線(kill curve)，即劑量反應性曲線，來確定*篩選濃度。
一般而言，哺乳動物細胞50-500μg/mL;細菌/植物細胞20-200μg/mL;真菌300-1000μg/mL。
3. 殺滅曲線的建立
注意：為了篩選得到穩定表達目的蛋白的細胞株，需要確定能夠殺死未轉染宿主細胞的抗生素zui低濃度，可通過建立殺滅曲線(劑量反應曲線)來實現，至少選擇5個濃度。
1) *天：未轉化的細胞按照20-25%的細胞密度鋪在合適的培養板上，37℃，CO2培養過夜;注：對于需要更高密度來檢測活力的細胞，可增加接種量。
2) 根據細胞類型，設定合適范圍內的濃度梯度。以哺乳動物細胞為例，可設定50，100，250，500，750，1000μg/mL。先用去離子水按照1:10的比例將母液稀釋到5 mg/ml，然后按照下表稀釋到相應濃度的工作液。
3) 第二天：替換舊的培養基，換用新鮮配制的含有相應濃度藥物的培養基。每個濃度做三個平行孔。
4) 接下來每3-4天更換新的含藥物培養基。
5) 按照固定的周期(如每2天)進行活細胞計數來確定阻止未轉染細胞生長的恰當濃度。選擇在理想的天數(通常是7-10天)內能夠殺死絕大多數細胞的zui低濃度為穩定轉染細胞篩選用的工作濃度。